Wiolaksantyna

Z Wikipedii, wolnej encyklopedii
Skocz do: nawigacja, szukaj
Wiolaksantyna
Wiolaksantyna
Nazewnictwo
Ogólne informacje
Wzór sumaryczny C40H56O4
Masa molowa 600,85 g/mol
Wygląd pomarańczowe kryształy
Identyfikacja
Numer CAS 126-29-4
PubChem 448438[1]
Jeżeli nie podano inaczej, dane dotyczą
stanu standardowego (25 °C, 1000 hPa)

Wiolaksantyna (E161e) − organiczny związek chemiczny z grupy ksantofili (podgrupa karotenoidów). Naturalny, pomarańczowy barwnik spożywczy, występujący w kwiatach fiołków (Viola)[2].

Ksantofile są częścią aparaty fotosyntetycznego roślin wyższych, mogą być zarówno barwnikami pomocniczymi absorbującymi energię świetlną, jak i elementami strukturalnymi kompleksów zbierających światło[3]. Energia wzbudzenia może być przenoszona z wiolaksantyny z wydajnością około 54%[4]. Także u glonów stwierdzono przyczynianie się wiolaksantyny do absorpcji świata[5].

Wiolaksantyna bierze udział w cyklu ksantofilowym chroniącym rośliny przed nadmiarem światła. Wzajemne przekształcenie w zeaksantynę odbywa się z przy udziale deepoksydazy wiolaksantyny i epoksydazy zeaksantyny. Produktem pośrednim jest anteraksantyna[6]. Cykl ksantofilowy zapewnia ochronę przed nadmiarem światła roślinom oraz glonom[7]. Przekształcenie wiolaksantyny w zeaksantynę wiąże się ze mianami konformacyjni w kompleksach LHC co umożliwia wygaszenie fluorescencji przez rozpraszanie ciepła[8][9]. Wiolaksantyna jest też substratem dla szlaku biosyntezy kwasu abscysynowego[10].

Wiolaksantyna jest także stosowana (choć już rzadko) do barwienia żywności. Dopuszczalne dzienne spożycie wynosi 5 mg/kg ciała[2].

Bibliografia[edytuj | edytuj kod]

  1. Wiolaksantyna – podsumowanie (ang.). PubChem Public Chemical Database.
  2. 2,0 2,1 Food-Info.net: E161d: Wioloksantyna (pol.). [dostęp 2011-01-09].
  3. L. Dall'Osto, A. Fiore, S. Cazzaniga, G. Giuliano i inni. Different roles of alpha- and beta-branch xanthophylls in photosystem assembly and photoprotection.. „J Biol Chem”. 282 (48), s. 35056-68, Nov 2007. DOI: 10.1074/jbc.M704729200. PMID: 17913714. 
  4. WI. Gruszecki, W. Grudzinski, A. Banaszek-Glos, M. Matula i inni. Xanthophyll pigments in light-harvesting complex II in monomolecular layers: localisation, energy transfer and orientation. „Biochim Biophys Acta”. 1412 (2), s. 173-83, Jun 1999. PMID: 10393259. 
  5. C. Wilhelm, I. Lenarz-Weiler. Energy transfer and pigment composition in three chlorophyll b-containing light-harvesting complexes isolated from Mantoniella squamata (Prasinophyceae), Chlorella fusca (Chlorophyceae) and Sinapis alba.. „Photosynth Res”. 13 (2), s. 101-11, Jan 1987. DOI: 10.1007/BF00035234. PMID: 24435780. 
  6. AD. Hieber, RC. Bugos, HY. Yamamoto. Plant lipocalins: violaxanthin de-epoxidase and zeaxanthin epoxidase.. „Biochim Biophys Acta”. 1482 (1-2), s. 84-91, Oct 2000. PMID: 11058750. 
  7. P. Jahns, D. Latowski, K. Strzalka. Mechanism and regulation of the violaxanthin cycle: the role of antenna proteins and membrane lipids.. „Biochim Biophys Acta”. 1787 (1), s. 3-14, Jan 2009. DOI: 10.1016/j.bbabio.2008.09.013. PMID: 18976630. 
  8. T. Morosinotto, R. Baronio, R. Bassi. Dynamics of chromophore binding to Lhc proteins in vivo and in vitro during operation of the xanthophyll cycle.. „J Biol Chem”. 277 (40), s. 36913-20, Oct 2002. DOI: 10.1074/jbc.M205339200. PMID: 12114527. 
  9. AJ. Young, HA. Frank. Energy transfer reactions involving carotenoids: quenching of chlorophyll fluorescence.. „J Photochem Photobiol B”. 36 (1), s. 3-15, Oct 1996. DOI: 10.1016/S1011-1344(96)07397-6. PMID: 8988608. 
  10. H. Neuman, N. Galpaz, FX. Cunningham, D. Zamir i inni. The tomato mutation nxd1 reveals a gene necessary for neoxanthin biosynthesis and demonstrates that violaxanthin is a sufficient precursor for abscisic acid biosynthesis.. „Plant J”. 78 (1), s. 80-93, Apr 2014. DOI: 10.1111/tpj.12451. PMID: 24506237.