Corynebacterium glutamicum

Z Wikipedii, wolnej encyklopedii
Corynebacterium glutamicum
Systematyka[1]
Domena

bakterie

Typ

Actinobacteria

Klasa

Actinobacteriae

Rząd

Corynebacteriales

Rodzina

Corynebacteriaceae

Rodzaj

Corynebacterium

Gatunek

Corynebacterium glutamicum

Nazwa systematyczna
Corynebacterium glutamicum Abe S. i wsp. (1967)
[2]

Corynebacterium glutamicumbakteria Gram-dodatnia należąca do rodziny Corynebacteriaceae[3]. Jest to względnie beztlenowy, nieprzetrwalnikujący, mezofilny maczugowiec o wymiarach 0,7–1,0 × 1,0–3,0 μm[4][5]. Znajduje duże zastosowanie w produkcji aminokwasów, kwasów organicznych oraz witamin[6].

Historia[edytuj | edytuj kod]

Bakteria Corynebacterium glutamicum została po raz pierwszy wyizolowana przez Shukuo Kinoshita, Shigezo Udaka i Masakazu Shimono w 1956 z próbki gleby pobranej w Ueno Zoo położonego w Tokio[7].

Screening przeprowadzono poprzez wykonywanie licznych posiewów próbek pobranych ze środowiska. Przygotowane hodowle poddawano następnie wpływowi silnego promieniowania UV, następnie zabite bakterie pokryto podłożem agarowym zaszczepionym bakteriami z gatunku Leuconostoc mesenteroides P-60. Bakterie te są auksotrofami wobec kwasu glutaminowego, wzrost kolonii bakteryjnych należących do tego gatunku świadczył więc o obecności w podłożu kwasu glutaminowego[7].

Gatunek ten początkowo znany był jako Micrococcus glutamicus, następnie jako Brevibacterium flavum, po to by ostatecznie nadać mu obecną nazwę[8].

Charakterystyka[edytuj | edytuj kod]

Bakterie należące do rzędu Corynebacteriales charakteryzują się nieco inną budową powłoki komórkowej, w porównaniu do innych bakterii Gram-dodatnich. Oprócz błony komórkowej i ściany komórkowej obecna jest również zewnętrzna powłoka[9][10]. Błona ta złożona jest z arabinogalaktanu połączonego z kwasami mikolowymi o 22-36 atomach węgla[4].

Na powierzchni bakterii z gatunku Corynebacterium glutamicum obecna jest również warstwa S-layer. Składa się ona z białka PS2, kodowanego przez gen cspB. Długość białka PS2 zależy od konkretnej bakterii. W przeprowadzonej analizie komparatywnej 28 szczepów, długość białka PS2 wahała się pomiędzy 490 i 510 aminokwasami[11]. Genu cspB nie posiadają dwa szczepy C.glutamicum, ATCC 13032, ATCC 21831.[12]

Powstałe w wyniku podziału dwie komórki potomne pozostają połączone ze sobą, tworząc charakterystyczną strukturę w kształcie litery V. Komórki w koloniach często układają się również w grupy przypominające palisady[13].

Według danych NCBI na chwilę obecną zsekwencjonowano w całości genomy 28 szczepów, Corynebacterium glutamicum, natomiast 40 genomów zsekwencjonowanych jest częściowo, w formie contigów lub scaffoldów. Wielkość genomu waha się w granicach 2,84 – 3,36 Mb, zawartość GC w genomie natomiast w granicach 53,8 – 54,3%. Pierwszym szczepem, którego genom został w całości zsekwencjonowany jest szczep ATCC 13032, jest to genom o wielkości 3,31 Mb i zawartości GC na poziomie 53,8%.[1]

Analiza pangenomiczna 8 dzikich szczepów C. glutamicum (ATCC 13032, ATCC 14067, ATCC 13869, ATCC 13870, R, AS1.299, AS1.542, and T6-13) wykazała obecność 2359 genów w genomie rdzeniowym gatunku, dowiedziono również, że gatunek ten charakteryzuje się pangenomem otwartym. Do genomu pomocniczego C. glutamicum należą takie geny jak: gen kodujący dehydrogenazę glutaminianową (gdh), czy gen cspB kodujący białko PS2.[12]

W bakteriach z gatunku C. glutamicum wykryto obecność 22 plazmidów.[2]Część z nich tak jak plazmidy R: pAG1, pCG4, pTET3 i pXZ10145 zawierają geny warunkujące antybiotykooporność przeciwko tetracyklinie (geny tet(Z) i tet(33)), streptomycynie (geny aadA2 i aadA9), chloramfenikolu i sulfonamidom[14].

Do cech charakterystycznych genomu należy obecność regionów HGC1, regionu o długości ok. 20 kbp o wysokiej zawartości GC (66%) oraz LGC1, regionu o stosunkowo niskiej zawartości GC (41–49%). W genomie C. glutamicum wykryto również co najmniej 24 elementy insercyjne, które mogły zostać przeniesione w wyniku transferu horyzontalnego. Elementy te najczęściej znajdują się na granicach regionów wyróżniających się zawartością GC, np. HGC1.[15]

Badania porównawcze, podczas których analizowano kolejność ułożenia genów wykazały duży stopień podobieństwa pomiędzy trzema gatunkami z rodzaju Corynebacterium (C. glutamicum, C. efficiens i C. diphtheriae). Możliwą przyczyną tej wyjątkowej stabilności genetycznej jest brak genów recBCD kodujących rekombinacyjny system naprawczy. Brak tego systemu pozwolił na zachowanie oryginalnej kolejności genów[4].

Profil biochemiczny[edytuj | edytuj kod]

aktywność sacharolityczna[3]
glukoza +
fruktoza +
mannoza +
maltoza +
sacharoza +
trehaloza +
arabinoza
ksyloza
ramnoza
galaktoza
laktoza
rafinoza
salicyna
desktryna
skrobia
aktywność hydrolityczna[3]
eskulina
żelatyna
kazeina
aktywność enzymatyczna[3]
katalaza +
ureaza +

Występowanie[edytuj | edytuj kod]

C. glutamicum izolowano z próbek gleby zanieczyszczonej ptasimi odchodami, ścieków, obornika, warzyw i owoców[14].

Znaczenie[edytuj | edytuj kod]

Bakterie z gatunku C. glutamicum są wykorzystywane do produkcji związków chemicznych na skalę przemysłową. Na dużą wartość tego gatunku bakterii jako producentów, ma wpływ wiele cech, do których należą: status GRAS (Generally Recognized As Safe), szybki wzrost do wysokiej gęstości komórek w zawiesinie, stabilność genetyczna, niska aktywność zewnątrzkomórkowych proteaz, silne i łatwe w kontroli promotory, brak autolizy i utrzymanie aktywności metabolicznej w warunkach zatrzymania wzrostu, plastyczność metabolizmu, szerokie spektrum wykorzystywanych źródeł węgla, zdolność do wydzielania produkowanych białek do medium hodowlanego[16][7][17].

Do związków chemicznych produkowanych z udziałem C. glutamicum należą:

Przypisy[edytuj | edytuj kod]

  1. Parte A. i wsp. 2020.
  2. SHIGEO ABE, KEN-ICHIRO TAKAYAMA, SHUKUO KINOSHITA, Taxonomical Studies On Glutamic Acid-Producing Bacteria, „The Journal of General and Applied Microbiology”, 13 (3), 1967, s. 279–301, DOI10.2323/jgam.13.279 [dostęp 2021-03-09] (ang.).
  3. a b c d William B Whitman i inni red., Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria, wyd. 1, Wiley, 17 kwietnia 2015, DOI10.1002/9781118960608.gbm00026., ISBN 978-1-118-96060-8 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  4. a b c V. Gopinath, K.M. Nampoothiri, Corynebacterium glutamicum, Elsevier, 2014, s. 504–517, DOI10.1016/b978-0-12-384730-0.00076-8, ISBN 978-0-12-384733-1 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  5. William B Whitman i inni red., Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria, wyd. 1, Wiley, 17 kwietnia 2015, DOI10.1002/9781118960608.gbm00026, ISBN 978-1-118-96060-8 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  6. Judith Becker i inni, Corynebacterium glutamicum for Sustainable Bioproduction: From Metabolic Physiology to Systems Metabolic Engineering, Huimin Zhao, An-Ping Zeng (red.), t. 162, Cham: Springer International Publishing, 2016, s. 217–263, DOI10.1007/10_2016_21, ISBN 978-3-319-55317-7 [dostęp 2020-11-19].
  7. a b c d Hideaki Yukawa, Masayuki Inui, Corynebacterium glutamicum. Biology and biotechnology, Berlin: Springer, 2013, ISBN 978-3-642-29857-8, OCLC 808368407 [dostęp 2020-11-19].
  8. W. Liebl i inni, Transfer of Brevibacterium divaricatum DSM 20297T, „Brevibacterium flavum” DSM 20411, „Brevibacterium lactofermentum” DSM 20412 and DSM 1412, and Corynebacterium lilium DSM 20137T to Corynebacterium glutamicum and Their Distinction by rRNA Gene Restriction Patterns, „International Journal of Systematic Bacteriology”, 41 (2), 1991, s. 255–260, DOI10.1099/00207713-41-2-255, ISSN 0020-7713 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  9. Andreas Burkovski, Cell Envelope of Corynebacteria: Structure and Influence on Pathogenicity, „ISRN Microbiology”, 2013, 2013, s. 1–11, DOI10.1155/2013/935736, ISSN 2090-7486, PMID23724339, PMCIDPMC3658426 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  10. Marie-Antoinette Lanéelle, Maryelle Tropis, Mamadou Daffé, Current knowledge on mycolic acids in Corynebacterium glutamicum and their relevance for biotechnological processes, „Applied Microbiology and Biotechnology”, 97 (23), 2013, s. 9923–9930, DOI10.1007/s00253-013-5265-3, ISSN 0175-7598 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  11. Tea Pavkov-Keller, Stefan Howorka, Walter Keller, Chapter 3 – The Structure of Bacterial S-Layer Proteins, Stefan Howorka (red.), t. 103, Molecular Assembly in Natural and Engineered Systems, Academic Press, 2011, s. 73–130, DOI10.1016/b978-0-12-415906-8.00004-2 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  12. a b Junjie Yang, Sheng Yang, Comparative analysis of Corynebacterium glutamicum genomes: a new perspective for the industrial production of amino acids, „BMC Genomics”, 18 (1), 2017, s. 940, DOI10.1186/s12864-016-3255-4, ISSN 1471-2164, PMID28198668, PMCIDPMC5310272 [dostęp 2020-11-19].
  13. Michal Letek i inni, Cell growth and cell division in the rod-shaped actinomycete Corynebacterium glutamicum, „Antonie van Leeuwenhoek”, 94 (1), 2008, s. 99–109, DOI10.1007/s10482-008-9224-4, ISSN 0003-6072 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  14. a b Eugene Rosenberg i inni red., The Prokaryotes, Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg, 2014, DOI10.1007/978-3-642-30138-4, ISBN 978-3-642-30137-7 [dostęp 2020-11-19] (ang.).
  15. L Eggeling, Michael Bott, Handbook of corynebacterium glutamicum, Boca Raton: Taylor & Francis, 2005, ISBN 0-8493-1821-1, OCLC 56214763 [dostęp 2020-11-19].
  16. a b c Joo-Young Lee i inni, The Actinobacterium Corynebacterium glutamicum, an Industrial Workhorse, „Journal of Microbiology and Biotechnology”, 26 (5), 2016, s. 807–822, DOI10.4014/jmb.1601.01053, ISSN 1017-7825 [dostęp 2020-11-20] (ang.).
  17. Xiuxia Liu i inni, Protein secretion in Corynebacterium glutamicum, „Critical Reviews in Biotechnology”, 37 (4), 2017, s. 541–551, DOI10.1080/07388551.2016.1206059, ISSN 0738-8551 [dostęp 2020-11-22] (ang.).
  18. a b Judith Becker i inni, Corynebacterium glutamicum for Sustainable Bioproduction: From Metabolic Physiology to Systems Metabolic Engineering, Huimin Zhao, An-Ping Zeng (red.), Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology, Cham: Springer International Publishing, 2018, s. 217–263, DOI10.1007/10_2016_21, ISBN 978-3-319-55318-4 [dostęp 2020-11-20] (ang.).
  19. Nadja Henke i inni, Patchoulol Production with Metabolically Engineered Corynebacterium glutamicum, „Genes”, 9 (4), 2018, s. 219, DOI10.3390/genes9040219, ISSN 2073-4425, PMID29673223, PMCIDPMC5924561 [dostęp 2020-11-22] (ang.).
  20. Xiuxia Liu i inni, Protein secretion in Corynebacterium glutamicum, „Critical Reviews in Biotechnology”, 37 (4), 2017, s. 541–551, DOI10.1080/07388551.2016.1206059, ISSN 0738-8551, PMID27737570 [dostęp 2020-11-22].
  21. Jian Zha i inni, Metabolic engineering of Corynebacterium glutamicum for anthocyanin production, „Microbial Cell Factories”, 17 (1), 2018, s. 143, DOI10.1186/s12934-018-0990-z, ISSN 1475-2859, PMID30217197, PMCIDPMC6138892 [dostęp 2020-11-22].